Praktika (Auswahl)

Im Rahmen meines Studiengangs B. Sc. Humanbiologie war es mir möglich meine Bachelorarbeit in der Vertiefungsrichtung Parasitologie in der Arbeitsgruppe von Prof. Dr. Silaghi am Institut für Infektionsmedizin zu schreiben. Das Thema war dabei aufbauend auf vorherigen Untersuchungen, die Verbreitung von Zecken und deren Infektionsraten mit Borrelien und Anaplasma im Stadtpark Greifswald zu untersuchen. Teil dieser Arbeit war sowohl Feld- als auch Laborarbeit, was es mir ermöglicht hat spannende neue Methoden zu erarbeiten, sowie bereits bekannte Methoden zu vertiefen. Dazu gehörte das Sammeln (Flaggen) der Zecken im Stadtpark und die Identifizierung der Zeckenspezies am Mikroskop und per Sequenzierung. Die Ermittlung der Infektionsraten fand mittels PCR und qPCR statt. Dadurch war es mir möglich mit vielen verschiedenen Methoden zu arbeiten und das Arbeiten im Laboralltag erstmals kennenzulernen.

Während meines achtwöchigen Praktikums arbeitete ich schwerpunktmäßig im Rahmen des EU-Projekts BEPREP, das sich mit der Prävention von Epidemien und Pandemien beschäftigt, die häufig durch zoonotische oder vektorübertragene Erkrankungen verursacht werden. Das Projekt untersucht in verschiedenen europäischen und tropischen Fallstudien, wie Biodiversität und naturbasierte Maßnahmen dazu beitragen können, Infektionsdynamiken zu beeinflussen und Übertragungswege zu unterbrechen. In diesem Kontext waren meine Tätigen eine gute Mischung aus praktischer Laborarbeit und analytischen Aufgaben am Computer, was mir einen umfassenden Einblick in den Forschungsalltag der AG Knauf ermöglichte.

Im Labor arbeitete ich vor allem mit grundlegenden molekularbiologischen Methoden. Dazu gehörten die DNA- und RNA-Extraktion, gefolgt von PCR- und qPCR-Analysen zur Amplifikation und Quantifizierung spezifischer Sequenzen.

Meine Arbeit bestand darin, unterschiedliche Varianten des Proteins, von einem hoch bzw. niedrig pathogenen Influenza A Stamm, mittels Co-Transfektionen in verschiedenen Zellkulturen zu untersuchen. Interessant daran ist, das sich die beiden PA-X Proteine nur in wenigen Aminosäuren unterscheiden und dass das PA-X Protein das Ergebnis eines +1offenen Leserahmens eines anderen wichtigen Proteins, dem PA Protein, ist. Ziel war es den unterschiedlichen Einfluss des „Protein shut-off“ und der IFN-I Inhibierung zu analysieren. Neben der Transfektion nutzte ich weitere Methoden, wie z.B. Luziferase Assays, Western Blot Analysen und verschiedene Klonierungsmethoden, um den Einfluss des Protein zu analysieren oder neue Proteinvarianten herzustellen, welche durch mich ebenfalls untersucht wurden. Neben meiner Laborarbeit konnte ich in wöchentlichen Arbeitsgruppenbesprechungen und Institutsmeetings Einblicke in andere Forschungsbereiche erlangen, meine Ergebnisse präsentieren und mich mit anderen Kollegen und Kolleginnen über unsere Ergebnisse austauschen und darüber diskutieren.  

Im Rahmen meines Biologie-Studiums an der Universität Greifswald habe ich die Möglichkeit erhalten, ein vierwöchiges Praktikum am Friedrich-Loeffler-Institut auf der Insel Riems zu absolvieren. Dabei habe ich spannende Einblicke in die Virusforschung und den allgemeinen Laboralltag erhalten. Zudem konnte ich Verfahren, welche zuvor in Vorlesungen erläutert wurden, nun anwenden. Als Hauptaufgabe konnte ich selbst an der Optimierung der Genexpression des Gänse Interferon-γ (GoIFN-γ) in E.coli arbeiten. Einen weiteren interessanten Einblick habe ich im Insektarium bei den Zecken, Gnitzen und Mücken erhalten. Dabei durfte ich Puppen picken und Mücken absaugen. Des Weiteren habe ich zum ersten Mal ein Elektronenmikroskop gesehen und konnte mir Herpes-Viren durch dieses anschauen.

Während dieser Zeit war ich in ein Forschungsprojekt zum MERS-Coronavirus eingebunden. Ich unterstützte unter anderem bei der Aufbereitung und Auswertung zahlreicher Organproben und Gewebeschnitte. Dabei lernte ich verschiedene histologische Techniken kennen – darunter das Zuschneiden formalinfixierter Organproben, die Einbettung, das Schneiden der Gewebe am Mikrotom sowie die HE-Färbung und immunhistochemische Untersuchungen. Mit der Unterstützung meines Praktikumsbetreuers Tobias Britzke und des Technischen Assistenten Robin Brandt konnte ich diese Arbeitsschritte zunächst unter Anleitung und schon nach etwa einer Woche eigenständig durchführen.

Ein weiterer zentraler Bestandteil meines Praktikums war die Auswertung der Färbungen – eine Herausforderung, da dieser Bereich im Studium bisher kaum behandelt wurde. Dank der umfangreichen Materialien und Literatur, die mir zur Verfügung gestellt wurden, konnte ich mich jedoch gut einarbeiten und gleichzeitig meine Fähigkeiten in der Literaturrecherche und im Umgang mit englischsprachigen Fachtexten verbessern.

Besonders gefallen hat mir die abwechslungsreiche und praxisnahe Arbeit: Es gab immer etwas zu tun, und ich hatte nie das Gefühl, untätig zu sein. Sobald ich mit den Abläufen vertraut war, konnte ich meine Arbeitszeiten flexibel gestalten. Außerdem war jederzeit eine Ansprechperson für Fragen und Unterstützung vor Ort.

Vier hallensische Studierende wagten sich auf die Insel Riems - eine der sichersten und gleichzeitig gefährlichsten Orte Deutschlands. Der Grund: Nicht etwa eine Mutprobe, sondern ein fünftägiges Praktikum im Rahmen des Masterstudiengangs Agrarwissenschaften an der Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg. Das Modul „Tierseuchen und deren Bekämpfung“ gab uns zum einen spannende Einblicke in die Geschichte von und um Friedrich Loeffler sowie in die Entstehung des Instituts auf der Insel. Zum anderen wurden wir in die Grundlagen der Virologie eingeführt und lernten verschiedene Methoden der Labordiagnostik kennen, besonders im Zusammenhang mit BVD (Bovine Virusdiarrhoe) und dem Schmallenberg-Virus (SBV). Unter der fachlichen Anleitung und den wachsamen Augen von Frau PD Dr. Wernike und Frau Hillmann konnten wir unsere praktischen Kompetenzen im Labor austesten und erweitern - manchmal mit mehr und manchmal mit weniger Erfolg. Denn: Beim Pipettieren und beim Vorbereiten und Durchführen u. a. von ELISA- und PCR-Tests zeigten sich schnell die Herausforderungen und Feinheiten dieser diagnostischen Verfahren. Ein weiteres Highlight war die Führung durch Herrn Prof. Dr. Dr. h. c. mult. Thomas C. Mettenleiter, der viele Jahre Präsident des FLIs war und dieses entscheidend geprägt hat. Er gab uns einen beeindruckenden Einblick in die faszinierende Welt der Viren und erklärte, wie bedeutend deren Erforschung für die Bekämpfung von Tierseuchen ist.

Im Rahmen meines Veterinärmedizin-Studiums an der Justus-Liebig-Universität Gießen hatte ich die Gelegenheit, acht Wochen meines praktischen Jahres am Friedrich-Loeffler-Institut auf der Insel Riems zu absolvieren. Ich konnte im Labor von Frau Dr. habil. Ute Ziegler in die Welt der Forschung eintauchen. Der Fokus ihrer Arbeitsgruppe liegt in der Forschung zu West-Nil- und Usutu-Virus sowie der Verbreitung dieser Flaviviren in Deutschland. Weiterhin ist dort das Nationale Referenzlabor für West-Nil-Virus Infektionen bei Vogel und Pferd angesiedelt, wo jährlich viele Einsendungen bearbeitet werden. Es waren sehr vielseitige zwei Monate, in denen ich sowohl unter Anleitung als auch eigenverantwortlich Einblicke in den vielfältigen Laboralltag gewinnen, an Sektionen teilnehmen, histologische Schnitte färben und anschließend mikroskopisch betrachten durfte.

Obwohl meine bisherigen praktischen Laborerfahrungen begrenzt waren, fand ich dank des Laborteams einen sehr guten Einstieg in wissenschaftliche Fragestellungen und die Arbeit im Labor. Dadurch konnte ich Grundlagen aus meinen Kursen vertiefen und Methoden wie Probenbearbeitung, ELISA-Tests, RNA-Extraktion und RNA-RT-qPCR praktisch anwenden und festigen.

Vom Hörsaal ins Labor - vier Tage lang durften fünf Tiermedizinstudenten der LMU München das Friedrich-Loeffler Institut kennenlernen. Neben zahlreichen informativen und spannenden Vorträgen zu virologischer Forschung und aktuellen Tierseuchengeschehen wie Afrikanische Schweinepest und MKS, durften wir auch selbst grundlegende Labormethoden ausprobieren. Dazu gehörten neben PCR und ELISA auch Nukleinsäureextraktion, Virustitration und Einblicke in die Arbeit mit dem Fluoreszenzmikroskop. Dabei konnten wir unsere in der Uni theoretisch erworbenen Kenntnisse praktisch anwenden und mit aktuellen Fällen verknüpfen.

Als Tiermedizinstudentin aus München habe ich mich sehr über die Möglichkeit gefreut, im Rahmen meines großen kurativen Praktikums vier Wochen am Institut für Virusdiagnostik des Friedrich-Loeffler-Instituts zu absolvieren, nachdem ich dieses im Vorjahr bereits innerhalb eines Wahlpflichtfachs kennenlernen durfte. 

Im Labor unter der Leitung von Dr. Patricia König konnte ich einen tieferen Einblick in vielfältige Diagnostikmethoden gewinnen, welche von Virusanzucht über ELISA bis hin zur PCR reichten und die ich unter Anleitung eigenständig durchführen durfte. Probenaufbereitung von verschiedenen Organmaterialien und anschließende DNA- oder RNA-Extraktion, Chargenprüfungen von kommerziellen Test-Kits sowie das Subkultivieren von Zellkulturen gehörten dabei routinemäßig zu meinen Aufgaben. Auch an der Etablierung eines Verfahrens zur Myxomatose-Diagnostik mittels indirektem ELISA durfte ich mitwirken. 

Zudem konnte ich an zahlreichen fachlichen Vorträgen und Seminaren teilnehmen, mich mit einigen Doktoranden und PostDocs über ihre Projekte austauschen und mich so über eine Perspektive außerhalb der kurativen Tierarztpraxis informieren. Dank der guten Organisation meiner Laborleiterin hatte ich außerdem die Gelegenheit, gemeinsam mit Dr. Sandra Blome die Vorbereitungen eines geplanten Tierversuchs mit einer Wildschweinbache und deren Frischlingen sowie eine Sektion mit Organprobenentnahme mitzuerleben. 

Insgesamt war die Zeit von interessanten Forschungsarbeiten und einem breiten Spektrum labortechnischer Arbeitsmethoden geprägt, wofür ich ein großes Dankeschön an das Labor König aussprechen möchte und insbesondere an Maria Justiniano Suarez, die mich in den laufenden diagnostischen Labortätigkeiten bestens angeleitet hat und mir jederzeit bei Fragen zur Seite stand. So konnte ich vor allem meine praktischen Laborfertigkeiten erweitern.

I am Pratik Kiju, a veterinarian and Erasmus scholar pursuing a joint master's degree in Infectious Disease and One Health (MSc IDOH). As part of the MSc IDOH, I had the incredible opportunity to undertake my final semester thesis at the Institute of International Animal Health/One Health (IITG), Friedrich Loeffler Institute. I conducted a proof-of-concept study using wheat-supplemented water samples to screen for zoonotic pathogens non-invasively in wild mammals on Riems Island, and also monitored the activity of these mammals using wildlife cameras. I carried out the thesis under the close supervision of Dr. Anja Globig and Sylvia Dreyer, PhD. Their role has been instrumental in shaping the research work.

I completed a 7-month internship as part of my Bachelor's degree in Applied Science – Biomedical Route at Zuyd University of Applied Sciences in Heerlen. My internship took place within the Institute of Diagnostic Virology at the Friedrich-Loeffler-Institut (FLI), in the laboratory of PD Dr. Dennis Rubbenstroth.

During my internship, my task was to develop and improve serological methods for the detection of antibodies against the  rustrela virus (RusV). RusV, a relative of the human rubella virus, has only recently been discovered and was shown to cause fatal neurologic diseases in a broad range of mammals.

Over the course of my internship, I gained in-depth experience with serological techniques, molecular tools and cell culture. I also had the opportunity to observe and learn from a variety of other research projects conducted by my colleagues at the FLI, further broadening my scientific perspective.

I would like to express my sincere gratitude to the colleagues at the FLI for their invaluable support, mentorship, and guidance throughout my stay. I would also like to thank all other members of the institute who contributed to making this an unforgettable and enriching experience.

Finally, I am deeply thankful to the Society of Friends of the Friedrich-Loeffler-Institut for their financial support, which made this internship possible.

Mein Praktikum absolvierte ich in der Abteilung „Experimentelle Tierhaltung und Biosicherheit – Pathologie“ unter der Leitung von Frau Dr. Breithaupt. Von Beginn an wurde ich herzlich in das Team aufgenommen und erhielt die Möglichkeit, eigenständig an einem Forschungsprojekt mitzuarbeiten. Im Rahmen einer Studie zur Aviären Influenza untersuchte ich pathologische Veränderungen bei geimpften und ungeimpfte Tieren. Ziel des Projekts war es, anhand histologischer (HE) und immunhistochemischer (IHC) Färbungen zu untersuchen, ob und inwieweit die verabreichten Impfstoffe eine Wirkung bei den Versuchstieren gezeigt haben. Dabei wurden die Gewebeproben sowohl geimpfter als auch ungeimpfter Tiere ausgewertet, um pathologische Veränderungen in verschiedenen Organen systematisch zu vergleichen. Die Mitarbeit an diesem praxisrelevanten Projekt war für mich nicht nur fachlich bereichernd, sondern auch persönlich sehr motivierend.

Ein besonderer Schwerpunkt meiner Tätigkeit lag auf der praktischen Durchführung histologischer Arbeitsschritte: vom Einbetten frischer Proben in Paraffin über das Schneiden am Mikrotom und das Aufziehen der Schnitte bis hin zur Durchführung und Auswertung von HE- und IHC-Färbungen. Die intensive Beschäftigung mit histologischen Präparaten ermöglichte es mir, mein Wissen in Histologie zu festigen und ein tieferes Verständnis für pathologische Prozesse zu entwickeln. Darüber hinaus hielt ich im Verlauf des Praktikums zwei Präsentationen – eine über eine spezielle Färbemethode, die andere über die vorliegende Impfstudie –, was meine Fähigkeit zur wissenschaftlichen Aufbereitung und Kommunikation weiter schärfte.

In meinem Praktikum konnte ich in viele unterschiedliche Arbeitsbereiche einen Einblick erhalten. Hauptsächlich arbeitete ich an einem EU-Projekt mit, das den Einfluss von Biodiversität auf die Prävalenz zoonotischer Erreger untersucht. Das bedeutete für mich, dass ich viel selbstständig im Labor arbeiten durfte und Routine in verschiedenen Verfahren wie DNA-/RNA-Extraktionen, sowie konventionelle PCRs, aber auch qPCRs erlangen konnte. Hauptsächlich testeten wir verschiedene Proben von Nagetieren auf Krankheitserreger.
Zudem war ich parallel noch für ein anderes Projekt an der Datenextraktion aus wissenschaftlichen Veröffentlichungen zu vernachlässigten Tropenkrankheiten wie Tungiasis und Buruli ulcer beteiligt.

Für einzelne Tage durfte ich außerdem noch in die Aviäre-Influenza-Forschung der Arbeitsgruppe von Dr. Anja Globig hineinschnuppern, was mir gute Einblicke in die Feldforschung ermöglichte.
Das Praktikum hat mir gezeigt, wie vielfältig wissenschaftliches Arbeiten in der Tiermedizin sein kann und ich konnte spannende Einblicke in unterschiedliche Bereiche von internationaler Tiergesundheit und dem One Health Ansatz bekommen. Neben den vielen praktischen Fertigkeiten im Labor, konnte ich mir auch einiges an theoretisches Wissen aneignen. Besonders interessant und hilfreich fand ich das IITG PhD-Meeting jeden Mittwoch, bei dem die Ergebnisse bzw. Fortschritte der unterschiedlichen Projekte der Doktorand*innen präsentiert und diskutiert wurden. Somit konnte ich auch gute Einblicke in die Arbeit als Doktorand*in bekommen und worauf bei wissenschaftlichem Arbeiten zu achten ist. 

Für mich war es eine sehr vielseitige Zeit. Ich konnte sowohl bei Vorträgen lauschen, im Labor mitarbeiten als auch an Tierversuchen teilnehmen. Ich kann ehrlich sagen, dass mir nie langweilig wurde, was natürlich auch an dem tollen Team, das mich so herzlich aufgenommen hat, liegt.

Im Labor konnte ich die Basics, die ich bereits im Studium kennengelernt habe, vertiefen und auch meine praktischen Fähigkeiten verbessern. Dazu gehören zum Beispiel PCR, Extraktion von RNA, das Arbeiten mit Zellkulturen, Plaque-Tests und Titrationen. Wir beschäftigten uns mit der Herstellung von chimären Viren als Impfstoffkandidaten. 
Im Rahmen dieses Projekts wurde auch ein Tierversuch betreut, sodass ich einen Teil meiner Zeit im Stall verbringen konnte. Sowohl Probenentnahmen als auch deren Bearbeitung gehörten dabei zu meinem Alltag. 

Meine Tätigkeiten während des Praktikums waren weit gestreut: von der Sektion eines Frettchens mit anschließender Diagnosestellung, Zuschneiden der Formalin-fixierten Organproben über das Einbetten dieser in Paraffin bis zum Anfertigen der Gewebeschnitte am Mikrotom mit anschließender Übersichtsfärbung. Zusätzlich durfte ich den Doktoranden der Arbeitsgruppe oftmals bei ihren Arbeiten über die Schulter schauen. Besonders gefallen hat mir, dass ich mein eigenes Projekt bearbeiten durfte: die Antikörper-Etablierung des Markers Synaptophysin, der für immunhistochemische Untersuchungen verwendet werden soll. Sehr hilfreich für eine die Arbeit im wissenschaftlichen Bereich war außerdem das Seminar zur Literaturrecherche unter der Leitung von Fr. Naß in der hauseigenen Bibliothek, an dem ich teilnehmen durfte.  In allen Bereichen des Instituts wurde ich fachlich sehr gut und menschlich einfühlsam betreut, auch eine lockere Unterhaltung war jederzeit möglich und der Spaß an der Arbeit waren stets im gesamten Team spürbar.
Durch das Praktikum habe ich einen vielseitigen und tiefen Einblick in die Forschung bekommen, wodurch ich meine berufliche Ausrichtung und Ambitionen bezüglich einer Doktorarbeit vertiefen kann.

Ich hatte den Wunsch, im Rahmen meines Tiermedizinstudiums an der LMU München einen Teil meines großen kurativen Praktikums in der Forschung zu absolvieren. Daher habe ich mich sehr über die Möglichkeit gefreut, während eines Zeitraumes von sechs Wochen detaillierte Einblicke im Institut für Epidemiologie sammeln zu dürfen.
Einen großen Teil meiner Zeit habe ich der Aufarbeitung von Daten der letzten Seuchenausbrüche der Afrikanischen Schweinepest 2024 in Deutschland gewidmet.
Dabei wurde ich mit der Programmiersprache R vor neue Herausforderungen gestellt. 
Mit Excel und RStudio habe ich PCR- und ELISA-Ergebnisse von Tuper-, Blut- und Serumproben von Schweinen betroffener Betriebe in verschiedenen Diagrammen veranschaulicht und ausgewertet. Zudem habe ich mich mit der Sensitivität und Spezifität der Tupferproben beschäftigt. 

I am Nishitha, from Kerala, India. I am pursuing my MSc in Epidemiology at the Institut für Medizinische Informationsverarbeitung, Biometrie und Epidemiologie (IBE), Ludwig-Maximilians-Universität München (LMU), Munich. When I applied for the internship at the Institute of Epidemiology (IfE), Friederich-Loeffler-Institut (FLI) Riems, I had many apprehensions—the usual ones expected from someone for whom everything is new: academic milieu, country, culture, people, seasons, lifestyle, and food. But then, fingers crossed, one proceeds with courage. And I am glad I did because the 18 weeks of internship at IfE have been the best one so far in my career.

Under the mentorship of Dr. Dr. Hannes Bergmann, I worked on a systematic review of potential risk factors of Lumpy Skin Disease in cattles. My tasks included executing customized search strings in various literature databases, extracting metadata in different formats from search results, using R for de-duplication of data, conducting title and abstract screening, utilizing R to analyze risk factors from screened data, generating histograms, RAKE (Rapid Automatic Keyword Extraction) scores, co-occurrence networks, and timeline graphs.

From this beautiful view at the Laboratory of Vaccines and Vaccine Safety (see picture on the right), I had the opportunity to write my master’s thesis. As a veterinarian and master’s student in Biotechnology at the Berliner Hochschule für Technik, the Friedrich-Loeffler-Institute (FLI) was the ideal place to carry out my research, where animal health and research come together.
I had the chance to work in the laboratory of Dr. Max Bastian, under his supervision, which was an incredible experience. I learned a lot and participated in several ongoing projects within the lab. My thesis focused on the development and establishment of an in vitro analytical approach to assess the composition of the three commercial vaccines used in Germany against Bluetongue Virus serotype 3: BulTaVo 3, BLUEVAC-3, and Syvazul.

This project addressed the re-emergence of Bluetongue disease in Europe and the urgent need for rapid vaccination programs, where time limitations often do not allow for thorough evaluation in in-vivo studies. To overcome this, I applied and adapted a quantification method based on immunoblotting. The technique had originally been developed for antigen-quantification in aluminium hydroxide–adjuvanted rabies vaccines. The study also involved mass spectrometry and serum neutralization assays to evaluate vaccine composition and test the reactivity of animal-derived sera and antibodies against the viral antigens. Light microscopy was used to visualize aluminium hydroxide particles, and a sedimentation assay was performed to measure adjuvant content, with results compared to the manufacturers' declared values. The overarching goal was to establish a cost-effective, time-efficient in vitro framework for rapid vaccine evaluation.

My experience at the FLI was truly exceptional. It is a fantastic place for any student eager to engage in meaningful research and be inspired by talented scientists. I learned so much about teamwork, had the opportunity to explore ideas, conduct meaningful experiments, and felt genuinely supported as a young master’s student preparing for the next step of my career.

Mein Praktikum war vielfältig: Ich lernte die Zucht von Stechmücken, Gnitzen und Zecken kennen und arbeitete an Infektionsversuchen mit Usutu-, Sindbis- und Schmallenberg-Viren. Diese Viren gehören zu den Arboviren, die durch Arthropoden übertragen werden und sowohl für Tiere als auch Menschen gesundheitliche Risiken darstellen können. 
Dabei infizierten wir Stechmückenlarven mit virusbelastetem Futter (Vero-Zellen) und adulte Stechmücken über künstliche Blutmahlzeiten. Die Ausscheidungen der Stechmücken sowie ihre Speichelsekrete (gewonnen via "Salivation Assay", bei dem die Tiere in Pufferlösung „abspeicheln“) wurden anschließend auf Virus untersucht. Dafür führten wir molekularbiologische Methoden wie DNA-Extraktionen, PCR und RT-qPCR durch. Ein weiteres Highlight war die Feldarbeit mit Patrick Gutjahr, bei der wir Stechmückenfallen in der Region Peenetal aufstellten.
Diese Forschung finde ich nicht nur spannend, sondern auch besonders relevant, da sie dazu beiträgt, besser zu verstehen, wie Zoonosen durch Insekten übertragen werden können und wie sich Infektionsrisiken gezielt minimieren lassen - ein zentraler Aspekt des „One Health“-Ansatzes, der die enge Verbindung zwischen Umwelt, Tier und Mensch betont. Danke an das FLI und den Förderverein für das Ermöglichen dieses spannenden Praktikums. 

Betreut wurde ich während der zwei Monate von Dr. Gang Pei und durfte dabei sogar mein eigenes kleines Projekt durchführen, wofür ich sehr dankbar bin.
Dabei habe ich mich mit der Interferon Antwort von Ägyptischen Nilflughunden beschäftigt, die ein natürliches Reservoir von vielen zoonotischen Viren wie Marburg und Sosuga darstellen und somit ein sehr relevantes Forschungsthema sind. Für mich war dies besonders interessant, da ich zum Beispiel viel über die durch andere Flughunde übertragene Zoonosen Hendra und Nipah gelernt habe, da diese Krankheiten natürlich besonders relevant für die Tiermedizin sind und den Alltag von Tierärzt_innen beeinflussen. Ich habe mich mit Interferon Beta (IFN-ß) beschäftigt, dass zur Gruppe der Typ I Interferone zählt. Dies kann unter anderem eine potente antivirale Immunantwort, zum Beispiel gegen oben genannte Krankheiten, auslösen. Denn es aktiviert über eine intrazelluläre Signalkaskade die Transkription von Interferon stimulierenden Genen, welche wiederum verschiedene Abwehrmechanismen gegen Viren vermitteln.

Während meines Praktikums konnte ich bei aktuellen Projekten mitwirken und insbesondere mit PD Dr. Bauer an einem neuen Impfstoff gegen Coxiellose bei Wiederkäuern forschen. Hervorgerufen wird die Krankheit durch das Gram-negative intrazelluläre Bakterium Coxiella burnetii, welches ein hohes zoonotisches Potential besitzt und beim Menschen Q-Fieber auslöst. Der aktuell kommerziell verfügbare Impfstoff für Wiederkäuer kann insbesondere bei Rindern und Ziegen zu Nebenwirkungen führen, wie beispielsweise Schwellungen an der Injektionsstelle und Milchrückgang. 
Um diese Nachteile zu überwinden wird im Rahmen des Cox-Save-Projekts ein neuer Impfstoffkandidat entwickelt. Bevor der Impfstoffkandidat im Tier zum Einsatz kommt, wird seine immunologische Wirksamkeit in primären Immunzellen charakterisiert. Zu diesen Arbeiten habe ich in meinem vierwöchigen Praktikum beigetragen. Dies beinhaltet die Aufreinigung von primären Immunzellen und die Durchführung von Zellkulturen. Nach Ausdifferenzierung der Zellen in Kultur wurden diese vergleichend mit lebenden und inaktivierten Coxiellen infiziert. Anschließend konnte ich mittels Durchflusszytometrie die Infektionsrate und die Intensität der Antigenpräsentation bestimmen. Eine Immunantwort wurde sowohl mit lebenden als auch fixierten Coxiellen detektiert.

My research project focused on the Rubella and Rustrela viruses, which belong to genus Rubivirus within the family Matonaviridae. The first one is responsible for the German measles disease observed in children or the congenital rubella syndrome. The second one, Rustrela virus was first described in 2020 and was discovered in various zoo animals following encephalitis. A causal link to staggering disease in cats was later also established. The reservoir for the virus is presumably the wood mouse.

Im Rahmen meines Biochemie-Studiums an der Universität Greifswald hatte ich die Gelegenheit, mein 6-wöchiges Praktikum am Friedrich-Loeffler-Institut auf der Insel Riems zu absolvieren. Dort konnte ich ein kleines Projekt in der Arbeitsgruppe von Kati Franzke durchführen.

Meine Aufgabe war es, die Expression von Interferon γ aus Gänsen in E. coli zu optimieren. Dabei konnte ich mein Wissen in den Bereichen PCR, der Transformation von DNA in Bakterien und dem allgemeinen Umgang mit DNA vertiefen.

Neben meinem Hauptprojekt, das mich die gesamten 6 Wochen begleitete, bekam ich auch Einblicke in weitere spannende Forschungsaspekte am FLI. So durfte ich bei einer Elektronenmikroskopie dabei sein und zum ersten Mal ein Viruspartikel mit eigenen Augen sehen. Zudem hatte ich die Möglichkeit, bei der Zucht von Mücken, Gnitzen und Zecken zu helfen. Auch wenn der ein oder andere Insektenstich nicht zu vermeiden war, fand ich es äußerst spannend, mehr über diese eher ungewöhnliche Tierzucht zu erfahren und wie sie organisiert wird.

Das Praktikum hat mir sehr viel Freude bereitet und mir viele neue Eindrücke vermittelt. Für diese großartige Möglichkeit und die stets freundliche Unterstützung bei all meinen Fragen möchte ich mich bei Kati Franzke und der gesamten Arbeitsgruppe ELMI bedanken. Außerdem danke ich allen anderen Mitarbeitenden des FLI, die immer hilfsbereit und offen waren. Ein herzliches Dankeschön geht auch an den Förderverein, dessen finanzielle Unterstützung dieses Praktikum erst ermöglicht hat.
 

Darüber hinaus hatte ich die Möglichkeit, aktiv mit Wildschweinen zu arbeiten und selber eine Ultraschalluntersuchung durchzuführen, was mir einen spannenden Einblick in die praktische Tiermedizin gab. Auch bei der Entnahme von Proben in der Sektionshalle durfte ich dabei sein, dass einen wichtigen Bestandteil der Arbeit in der Forschung darstellt. Im Rahmen meines Projekts habe ich eine Schnelltestmethode für die Afrikanische Schweinepest (ASP) überprüft, die auf isothermaler Amplifizierung basiert. Bisher ist eine solche Methode noch nicht auf dem Markt verfügbar. Es war eine großartige Erfahrung, diesen Test zu prüfen und aktiv an seiner Etablierung mitzuwirken. Zusätzlich hatte ich das Vergnügen, an spannenden Vorträgen teilzunehmen, die mein Wissen und Verständnis für die aktuellen Entwicklungen in der Forschung weiter vertieft haben.