Praktika (Auswahl)

In meinem Praktikum konnte ich in viele unterschiedliche Arbeitsbereiche einen Einblick erhalten. Hauptsächlich arbeitete ich an einem EU-Projekt mit, das den Einfluss von Biodiversität auf die Prävalenz zoonotischer Erreger untersucht. Das bedeutete für mich, dass ich viel selbstständig im Labor arbeiten durfte und Routine in verschiedenen Verfahren wie DNA-/RNA-Extraktionen, sowie konventionelle PCRs, aber auch qPCRs erlangen konnte. Hauptsächlich testeten wir verschiedene Proben von Nagetieren auf Krankheitserreger.
Zudem war ich parallel noch für ein anderes Projekt an der Datenextraktion aus wissenschaftlichen Veröffentlichungen zu vernachlässigten Tropenkrankheiten wie Tungiasis und Buruli ulcer beteiligt. 

Im Labor konnte ich die Basics, die ich bereits im Studium kennengelernt habe, vertiefen und auch meine praktischen Fähigkeiten verbessern. Dazu gehören zum Beispiel PCR, Extraktion von RNA, das Arbeiten mit Zellkulturen, Plaque-Tests und Titrationen. Wir beschäftigten uns mit der Herstellung von chimären Viren als Impfstoffkandidaten. 
Im Rahmen dieses Projekts wurde auch ein Tierversuch betreut, sodass ich einen Teil meiner Zeit im Stall verbringen konnte. Sowohl Probenentnahmen als auch deren Bearbeitung gehörten dabei zu meinem Alltag. 

Meine Tätigkeiten während des Praktikums waren weit gestreut: von der Sektion eines Frettchens mit anschließender Diagnosestellung, Zuschneiden der Formalin-fixierten Organproben über das Einbetten dieser in Paraffin bis zum Anfertigen der Gewebeschnitte am Mikrotom mit anschließender Übersichtsfärbung. Zusätzlich durfte ich den Doktoranden der Arbeitsgruppe oftmals bei ihren Arbeiten über die Schulter schauen. Besonders gefallen hat mir, dass ich mein eigenes Projekt bearbeiten durfte: die Antikörper-Etablierung des Markers Synaptophysin, der für immunhistochemische Untersuchungen verwendet werden soll. Sehr hilfreich für eine die Arbeit im wissenschaftlichen Bereich war außerdem das Seminar zur Literaturrecherche unter der Leitung von Fr. Naß in der hauseigenen Bibliothek, an dem ich teilnehmen durfte.  In allen Bereichen des Instituts wurde ich fachlich sehr gut und menschlich einfühlsam betreut, auch eine lockere Unterhaltung war jederzeit möglich und der Spaß an der Arbeit waren stets im gesamten Team spürbar.
Durch das Praktikum habe ich einen vielseitigen und tiefen Einblick in die Forschung bekommen, wodurch ich meine berufliche Ausrichtung und Ambitionen bezüglich einer Doktorarbeit vertiefen kann.

Ich hatte den Wunsch, im Rahmen meines Tiermedizinstudiums an der LMU München einen Teil meines großen kurativen Praktikums in der Forschung zu absolvieren. Daher habe ich mich sehr über die Möglichkeit gefreut, während eines Zeitraumes von sechs Wochen detaillierte Einblicke im Institut für Epidemiologie sammeln zu dürfen.
Einen großen Teil meiner Zeit habe ich der Aufarbeitung von Daten der letzten Seuchenausbrüche der Afrikanischen Schweinepest 2024 in Deutschland gewidmet.
Dabei wurde ich mit der Programmiersprache R vor neue Herausforderungen gestellt. 
Mit Excel und RStudio habe ich PCR- und ELISA-Ergebnisse von Tuper-, Blut- und Serumproben von Schweinen betroffener Betriebe in verschiedenen Diagrammen veranschaulicht und ausgewertet. Zudem habe ich mich mit der Sensitivität und Spezifität der Tupferproben beschäftigt. 

From this beautiful view at the Laboratory of Vaccines and Vaccine Safety (see picture on the right), I had the opportunity to write my master’s thesis. As a veterinarian and master’s student in Biotechnology at the Berliner Hochschule für Technik, the Friedrich-Loeffler-Institute (FLI) was the ideal place to carry out my research, where animal health and research come together.
I had the chance to work in the laboratory of Dr. Max Bastian, under his supervision, which was an incredible experience. I learned a lot and participated in several ongoing projects within the lab. My thesis focused on the development and establishment of an in vitro analytical approach to assess the composition of the three commercial vaccines used in Germany against Bluetongue Virus serotype 3: BulTaVo 3, BLUEVAC-3, and Syvazul.

This project addressed the re-emergence of Bluetongue disease in Europe and the urgent need for rapid vaccination programs, where time limitations often do not allow for thorough evaluation in in-vivo studies. To overcome this, I applied and adapted a quantification method based on immunoblotting. The technique had originally been developed for antigen-quantification in aluminium hydroxide–adjuvanted rabies vaccines. The study also involved mass spectrometry and serum neutralization assays to evaluate vaccine composition and test the reactivity of animal-derived sera and antibodies against the viral antigens. Light microscopy was used to visualize aluminium hydroxide particles, and a sedimentation assay was performed to measure adjuvant content, with results compared to the manufacturers' declared values. The overarching goal was to establish a cost-effective, time-efficient in vitro framework for rapid vaccine evaluation.

My experience at the FLI was truly exceptional. It is a fantastic place for any student eager to engage in meaningful research and be inspired by talented scientists. I learned so much about teamwork, had the opportunity to explore ideas, conduct meaningful experiments, and felt genuinely supported as a young master’s student preparing for the next step of my career.

Mein Praktikum war vielfältig: Ich lernte die Zucht von Stechmücken, Gnitzen und Zecken kennen und arbeitete an Infektionsversuchen mit Usutu-, Sindbis- und Schmallenberg-Viren. Diese Viren gehören zu den Arboviren, die durch Arthropoden übertragen werden und sowohl für Tiere als auch Menschen gesundheitliche Risiken darstellen können. 
Dabei infizierten wir Stechmückenlarven mit virusbelastetem Futter (Vero-Zellen) und adulte Stechmücken über künstliche Blutmahlzeiten. Die Ausscheidungen der Stechmücken sowie ihre Speichelsekrete (gewonnen via "Salivation Assay", bei dem die Tiere in Pufferlösung „abspeicheln“) wurden anschließend auf Virus untersucht. Dafür führten wir molekularbiologische Methoden wie DNA-Extraktionen, PCR und RT-qPCR durch. Ein weiteres Highlight war die Feldarbeit mit Patrick Gutjahr, bei der wir Stechmückenfallen in der Region Peenetal aufstellten.
Diese Forschung finde ich nicht nur spannend, sondern auch besonders relevant, da sie dazu beiträgt, besser zu verstehen, wie Zoonosen durch Insekten übertragen werden können und wie sich Infektionsrisiken gezielt minimieren lassen - ein zentraler Aspekt des „One Health“-Ansatzes, der die enge Verbindung zwischen Umwelt, Tier und Mensch betont. Danke an das FLI und den Förderverein für das Ermöglichen dieses spannenden Praktikums. 

Betreut wurde ich während der zwei Monate von Dr. Gang Pei und durfte dabei sogar mein eigenes kleines Projekt durchführen, wofür ich sehr dankbar bin.
Dabei habe ich mich mit der Interferon Antwort von Ägyptischen Nilflughunden beschäftigt, die ein natürliches Reservoir von vielen zoonotischen Viren wie Marburg und Sosuga darstellen und somit ein sehr relevantes Forschungsthema sind. Für mich war dies besonders interessant, da ich zum Beispiel viel über die durch andere Flughunde übertragene Zoonosen Hendra und Nipah gelernt habe, da diese Krankheiten natürlich besonders relevant für die Tiermedizin sind und den Alltag von Tierärzt_innen beeinflussen. Ich habe mich mit Interferon Beta (IFN-ß) beschäftigt, dass zur Gruppe der Typ I Interferone zählt. Dies kann unter anderem eine potente antivirale Immunantwort, zum Beispiel gegen oben genannte Krankheiten, auslösen. Denn es aktiviert über eine intrazelluläre Signalkaskade die Transkription von Interferon stimulierenden Genen, welche wiederum verschiedene Abwehrmechanismen gegen Viren vermitteln.

Während meines Praktikums konnte ich bei aktuellen Projekten mitwirken und insbesondere mit PD Dr. Bauer an einem neuen Impfstoff gegen Coxiellose bei Wiederkäuern forschen. Hervorgerufen wird die Krankheit durch das Gram-negative intrazelluläre Bakterium Coxiella burnetii, welches ein hohes zoonotisches Potential besitzt und beim Menschen Q-Fieber auslöst. Der aktuell kommerziell verfügbare Impfstoff für Wiederkäuer kann insbesondere bei Rindern und Ziegen zu Nebenwirkungen führen, wie beispielsweise Schwellungen an der Injektionsstelle und Milchrückgang. 
Um diese Nachteile zu überwinden wird im Rahmen des Cox-Save-Projekts ein neuer Impfstoffkandidat entwickelt. Bevor der Impfstoffkandidat im Tier zum Einsatz kommt, wird seine immunologische Wirksamkeit in primären Immunzellen charakterisiert. Zu diesen Arbeiten habe ich in meinem vierwöchigen Praktikum beigetragen. Dies beinhaltet die Aufreinigung von primären Immunzellen und die Durchführung von Zellkulturen. Nach Ausdifferenzierung der Zellen in Kultur wurden diese vergleichend mit lebenden und inaktivierten Coxiellen infiziert. Anschließend konnte ich mittels Durchflusszytometrie die Infektionsrate und die Intensität der Antigenpräsentation bestimmen. Eine Immunantwort wurde sowohl mit lebenden als auch fixierten Coxiellen detektiert.

My research project focused on the Rubella and Rustrela viruses, which belong to genus Rubivirus within the family Matonaviridae. The first one is responsible for the German measles disease observed in children or the congenital rubella syndrome. The second one, Rustrela virus was first described in 2020 and was discovered in various zoo animals following encephalitis. A causal link to staggering disease in cats was later also established. The reservoir for the virus is presumably the wood mouse.

Im Rahmen meines Biochemie-Studiums an der Universität Greifswald hatte ich die Gelegenheit, mein 6-wöchiges Praktikum am Friedrich-Loeffler-Institut auf der Insel Riems zu absolvieren. Dort konnte ich ein kleines Projekt in der Arbeitsgruppe von Kati Franzke durchführen.

Meine Aufgabe war es, die Expression von Interferon γ aus Gänsen in E. coli zu optimieren. Dabei konnte ich mein Wissen in den Bereichen PCR, der Transformation von DNA in Bakterien und dem allgemeinen Umgang mit DNA vertiefen.

Neben meinem Hauptprojekt, das mich die gesamten 6 Wochen begleitete, bekam ich auch Einblicke in weitere spannende Forschungsaspekte am FLI. So durfte ich bei einer Elektronenmikroskopie dabei sein und zum ersten Mal ein Viruspartikel mit eigenen Augen sehen. Zudem hatte ich die Möglichkeit, bei der Zucht von Mücken, Gnitzen und Zecken zu helfen. Auch wenn der ein oder andere Insektenstich nicht zu vermeiden war, fand ich es äußerst spannend, mehr über diese eher ungewöhnliche Tierzucht zu erfahren und wie sie organisiert wird.

Darüber hinaus hatte ich die Möglichkeit, aktiv mit Wildschweinen zu arbeiten und selber eine Ultraschalluntersuchung durchzuführen, was mir einen spannenden Einblick in die praktische Tiermedizin gab. Auch bei der Entnahme von Proben in der Sektionshalle durfte ich dabei sein, dass einen wichtigen Bestandteil der Arbeit in der Forschung darstellt. Im Rahmen meines Projekts habe ich eine Schnelltestmethode für die Afrikanische Schweinepest (ASP) überprüft, die auf isothermaler Amplifizierung basiert. Bisher ist eine solche Methode noch nicht auf dem Markt verfügbar. Es war eine großartige Erfahrung, diesen Test zu prüfen und aktiv an seiner Etablierung mitzuwirken.